雙熒光素酶報告基因檢測試劑盒 (高通量）說明書
上海起發生物科技有限公司（Shanghai BioHub Biotechnology Co., Ltd.）屬于上海起發實驗試劑有限公司（2009年成立）旗下的子公司，成立的初衷是建立上海起發生物自有品牌，打造優質的生物試劑民族自有品牌。降低成本的同時，把好生物產業鏈中的國產生物試劑品質關。未來讓每一個和我們一樣擁有民族情懷的企業，共同創世界優秀的中國生物制造企業，圓夢中國。
產品詳情
貨號 | 規格 | 價格 |
78EA10008-100T | 100T | ￥1,440.00 |
產品描述
報告基因檢測常用于研究真核生物基因表達調控，螢火蟲螢光素酶 和海腎螢光素酶可以分別催化底物螢光素(luciferin)和腔腸素(coelenterazine)發出生物螢光(bioluminescence)，這種發光反應具有良好的光學特征和濃度線性范圍，同時檢測的靈敏度高，可達到 10-20mol。兩種催化反應最適濃度不同，因此互不干擾， 配合使用形成一套高靈敏的雙熒光素酶報告基因檢測系統，其中海腎螢光素酶常作為內參照。
螢火蟲螢光素酶是一種分子量約為 61 kDa 的蛋白，在 ATP、鎂離子和氧氣存在的條件下，催化 luciferin 氧化成 oxyluciferin，在此過程中會發出波長約為 560 nm 的生物螢光。海腎螢光素酶是一種分子量約為 36 kDa 的蛋白，在氧氣存在的條件下，催化腔腸素(Coelenterazine)氧化成 coelenteramide，在此過程中會發出波長約為 480 nm 的生物螢光。在后加入海腎螢光素酶底物時，可有效淬滅螢火蟲熒光素酶催化 luciferin 的發光，而不干擾海腎螢光素酶的活性，從而實現雙螢光素酶報告基因檢測。生物螢光可以通過化學發光儀(luminometer)或)或多功能酶標儀進行測定。通過螢光素酶與其底物催化發光的體系，可以高效、靈敏地檢測基因的表達。檢測原理如圖所示：
圖 1.熒光素酶報告基因反應原理圖
產品組成
名稱 | 規格 | 保存條件 |
5x Universal lysis Buffer（ULB） | 20 mL | -20℃ |
Fluc Buffer A | 5 mL | -20℃ |
Fluc substrate | 干粉 | -20℃ |
Rluc Buffer B | 干粉 5 mL | -20℃ |
50x Rluc substrate | 100 μL | -20℃ |
運輸與保存
冰袋運輸，-20℃保存 6 個月，-80℃保存更長時間。
實驗步驟
1. 試劑準備：
（1）1x Universal lysis Buffer（ULB）配置：取所需體積的 5x Universal lysis Buffer 臨用前用三蒸水稀釋至1x；
（2）Fluc buffer A 工作液：試劑盒開始啟用時，將 Fluc buffer A 全部加入到 Fluc substrate 中，適當吹打搖勻至粉末充分溶解后，分裝到棕色管中-20℃保存備用；
（3）Rluc Buffer B 工作液：臨用前取 50x Rluc substrate 用 Rluc Buffer B 稀釋至 1x 用（按需配置），配置好的 Rluc Buffer B 工作液在 2-3 h 內使用有效（試劑配置過程中注意避光）。
2. 細胞裂解:
（1） 細胞裂解：取出孔板放置至恢復室溫，加入適量體積 1x ULB 振蕩器搖勻，室溫裂解 15min。細胞裂解液推薦使用量：
細胞培養板型號 | 96 孔板 | 24 孔板 | 12 孔板 | 6 孔板 |
1x Universal lysis Buffer（ULB）/孔 | 30 μL | 60 μL | 80 μL | 120 μL |
（2） 熒光酶標儀設定，正確開啟儀器，點擊檢測，選擇生物發光檢測功能，根據本批樣本的靈敏度選擇合適增益與積分時間，默認為增益 135，積分時間 10 s。
1)移液槍吹打混勻裂解液后，吸取 20 μL 到黑色孔板底部。（樣品數量過多時候建議使用移液槍經轉移和后續加液操作，若使用四周不透光的培養板可省略轉移操作）
2)向每孔中加入 100 μL Fluc buffer A，輕柔快速吹打混勻三次后，室溫孵育反應 5-10min 后，上機檢測記錄發光值（F 值）。
3)向每孔中加入 100 μL Rluc buffer B，輕柔快速吹打混勻三次后，室溫孵育反應 5-10min 后，上機檢測記錄發光值（R 值）。
（為保證結果準確性，在加入 Fluc buffer A 或Rluc buffer B 后，請在 1h 內完成檢測）
實驗案例分析
在 96 孔板中接種適量細胞過夜至貼壁狀態，第二天進行如下轉染：1.含有FXR 基因啟動子區的熒光素酶報告基因表達載體質粒；2.含有 FXR 基因啟動子區轉錄因子 E2 功能的重組表達載體質粒；3.海參熒光素酶重組表達載體質粒。轉染 6h 向每孔中加入不同單體藥物培養 48h，其中設置空白溶劑 DMSO 組。最后按試劑盒說明書操作裂解隨后進行熒光素酶報告基因活性檢測，結果如下（對應孔中所標白色字體數值為陽性激動劑的激動倍數）
圖 3 . 59 種單體藥物對X 基因啟動子區熒光素酶報告基因激動倍數熱圖（A1:為空白溶劑對照組；A2-J6: 59
種 FDA 上市藥物的實驗組）
經過上述實驗的高通量篩選確定 F3 孔對應單體藥物對FXR 啟動子區激動效果強，激動倍數為 45。同某進口“P"品牌一同測定該藥物對FXR 基因的激動曲線，并計算 EC50，結果如下：
圖 4.紅色：起發生物品牌測定 F3 單體藥物激動 FXR 基因啟動子區熒光素酶報告基因響應曲線；黃色：進口“P"品牌測定F3 單體藥物激動 FXR 基因啟動子區熒光素酶報告基因響應曲線（EC50）
1. 數據分析：
（1）實驗設計：根據實驗目的，每組實驗均應設置空白對照組，對照組和處理組。
a. 空白對照組
背景 F：未轉染細胞裂解液+ Fluc buffer A。
背景 R：未轉染細胞裂解液+ Fluc buffer A + Rluc buffer B。
注：空白對照組樣品量須與實驗樣品量相同，且與實驗樣品含有相同的培養基/血清組合。
b. 對照組：轉染細胞未經實驗因素處理 (即對照組 F 和對照組 R)。
c. 實驗組：轉染細胞經實驗化合物處理 (即實驗組F 和實驗組 R)。
計算結果：對照組比值=(對照組 F-背景 F)/(對照組 R-背景 R)，實驗組比值=(實驗組 F-背景 F）/(實驗組 R-背景 R)。
表達倍數= 實驗組比值/對照組比值。
注意事項
（1） 反應溫度：酶促反應對溫度較為敏感，加樣檢測前務必將檢測試劑以及細胞培養液平衡至室溫（20-25℃）。
（2） 檢測儀器：能檢測化學發光的儀器都適用，但由于不同儀器的設置和靈敏度不同，測得的光信號值也會不同。 檢測板：為防止孔間干擾，推薦使用不透光酶標板。
（3） 發光信號會受到檢測環境如培養基組分、溫度等影響，應確保同組內不同樣本檢測條件一致。
（4） 為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套。
（5） 本產品僅作科研用途！
